Состояние естественной резистентности и иммунологической реактивности у новорожденных телят при колибактериозе

устойчивость к некоторым антибиотикам значительно повышалась.

Для профилактики колибактериоза новорожденных телят М. А. Сидоров с

соавт. (1978, 1980, 1996) рекомендует применять колипротектан сразу после

рождения в дозе 10-15 мл per os и затем в течение двух дней в той же дозе

(всего 6 раз). Колипротектан способствует резкому снижению заболеваемости

(до 10-20%) и повышению сохранности телят (до 95-98 %). Применению

материнской и гетерогенной крови при острых желудочно-кишечных заболеваниях

новорожденных животных посвящено немало работ отечественных и зарубежных

авторов [H. Fey, 1972; Е. В. Андреев, М. Д. Бакуменко, А. К. Панасенко, В.

И. Тертышник, Л. Т. Лещенко, Р. И. Бессараб, 1983; Дж. Х. Б. Рой, 1982; У.

Риихикоски, 1986; А. А. Гутковский, Г. Л. Дворкин, 1989]. Опыты [В. П.

Урбан, 1966; В. К. Чернуха, 1968; В. П. Урбан, И. Л. Найманов, 1985; В. П.

Павлов, Т. Н. Грязнева, Е. В. Чичикова, 1988] показали, что использование

сывороточных поли- и гаммаглобулинов бывает более результативным, чем

применение цельной крови.

Из симптоматических средств E. W. Fisher and de la G. H. Fuente, 1972;

H. Rascova, 1974; Е. Рашкова, Т. Сехер, К. Рашка, В. Матейовска, Л. Палак,

1976; J. Blanu, J. H. Parvu, O. Lvanciu, 1983; R. J. Bywater, 1983; В. В.

Митюшин, 1984; H. J. Greene, 1984; I. M. Naylor, 1986; Г. Ангелов, Б.

Абделмалек, 1987; I. M. Naylor, 1987; А. И. Теш, 1990; Н. Т. Винников,

1993; А. Г. Шитый, Н. С. Дудникова, Л. М. Тихомирова, 1993; М. Х.

Шайхаманов, В. П. Грамолин, Б. М. Авакаяц, 1994, рекомендуют при

колибактериозе телят, сопровождающимся профузным поносом и сильным

обезвоживанием организма, применение водно-электролитных растворов. В связи

с тем, что объем плазмы крови уменьшается и она становится гипоосмотической

по отношению к кишечной жидкости, так как не только вода, но н ионы Na+,

K+, Cl- и HCO3- выходят из плазмы в просвет кишечника, а слизистая

кишечника превращается в секреторный орган, всасывание воды и электролитов

прекращается. Авторы рекомендуют в начале болезни, при легком течении,

изотонические растворы а при тяжелом течении — парентерально —

гипертонические, с обязательным включением ионов натрия, хлора и

бикарбоната.

Некоторые авторы рекомендуют витаминотерапию, например гексавит (А1, В1,

В2, В6, С, Е, Р). Рутин увеличивает продолжительность циркуляции солевых

кристалловидных растворов в кровяном русле и тем самым уменьшает

проницаемость капилляров. Витамин С устраняет гипоксию и метаболический

ацидоз, содействует нормализации окислительно-восстановительных процессов

[F. Blakemore, A. Davies, E. Eylenburg, Т. Moore, K. C. Sellers and A. N.

Worden, 1948; R. G. Hansen, P. H. Phillips, G. W. Rupel, 1976; В. А.

Аликаев, В. В. Матюшин, 1983; В. И. Федюк, 1983; У. Риихикоски, 1986; А. А.

Гутковский, Г. Л. Дворкин, 1989; Я. Я. Самуйленко, 1996].

Антисекреторные факторы (хлорпромазин и другие производные фенотиазина,

никотиновая кислота, опий, аспирин, соматостатин, гликокортикоиды,

амфотерицин В, производные барбариса и др.) приводят к нормальной абсорбции

электролитов и воды в кишечнике, ингибируя чрезмерную секрецию.

Хлорпромазин обладает сильным антисекреторным действием, ингибируя диарею,

вызванную энтеротоксином TL — Е. coli. Этот препарат ограничивает

чрезмерную активность циклического аденозинмонофосфата (сАМР). Он действует

анти-секреторно при лечении диареи, вызванной энтеротоксином TS — Е. coli.

Кроме анти-секреторной деятельности фенотиазиновые препараты обладают

довольно сильным бактерицидным действием, по отношению к некоторым штаммам

Е. coli. Кроме того данные препараты воздействуют на плазмиды,

ответственные за синтез адгезивных фимбрий, энтеротоксинов, а также

препятствуют комплексной резистентности эшерихий к антибиотикам и тормозят

синтез компонентов адгезивных антигенов, ограничивающие колонизирующее

действие [A. I. Furowicz, W. Zyska, 1988].

1.2. Специфическая иммунологическая реактивность телят в постнатальный

период

Молозиво является для новорожденного исключительно полноценной и легко

усвояемой пищей. Обеспечивая потребности новорожденного в необходимых

питательных веществах, оно, кроме того, является носителем иммунных тел и

антибактериальных веществ, передающихся от матери потомству, служащих для

защиты молодого организма от инфекции на первом этапе жизни.

Природа защитных свойств молозива была предметом длительного изучения.

Впервые исследования по выяснению роли молозива в создании иммунитета телят

начались после опубликования работ P. Ehrlich [1892], который установил,

что у детенышей, рожденных от мышей, иммунизированных рицином и абрином

невосприимчивость к этим ядам не передается плацентарным путем, а

появляется только после сосания молозива иммунизированных мышей.

Оценивая эксперименты Эрлиха И. И., М. Мечников [1951] писал: «В своих

этюдах об унаследованном иммунитете Эрлих указал еще на другой важный

фактор, именно на прямую передачу материнских антител в молоко при сосании.

Он прямо показал своими опытами над мышами, происходившими не от иммунных

матерей, а вскормленных иммунными самками, что благодаря этому, молодые

мыши были иммунизированы к рицину, абрину и столбнячному токсину. Это

интересное поле исследований дало много важных результатов, а в будущем,

наверное, будет еще многое достигнуто в этом направлении».

У различных видов животных, у которых эпителиохориальная плацента

(лошади, крупный рогатый скот, свиньи, козы) антитела не проникают из

материнского организма в плод плацентарным путем. У этих видов животных

передача антител от матери новорожденному возможна колостральным путем

(через молозиво). С молозивом новорожденные жвачные получает необходимый

запас иммунных тел. [П. П. Емельяненко, 1987; Ю. Н. Федоров, 1988; И. М.

Карпуть, 1993]

Иммунологическое исследование молозива показало, что концентрация

антител в молозиве превосходит таковую в сыворотке крови. Больше того,

молозиво содержит антитела, отсутствующие в сыворотке [В. А. Фортушний,

1984].

Результаты исследований Th. Smith and R.B. Little, 1922b; R. S. Comline

H. E. Roberts, D. A. Fitchen, 1951; R. S. Comline, H. E. Roberts, D.A.

Fitchen. 1951; H. Fey, 1968; A. Kaeckenbeeck, G. Colinet, F. Schoenaers,

1971; P. D Porter, 1972; W. J. Penhale, E. F. Logan, I. E. Selman, E. W

Fisher, 1973; У. Дж. Герберт, 1974; G. H. Stott and B. E. Menefel, 1977; J.

A. Patt, 1977; И. И. Головистиков, 1979; G. H. Stott, D. B. Marx, B. E.

Menefel and G. T. Nightengale, 1979; G. H. Stott, D. B. Marx, B. E. Menefel

and G. T. Nightengale, 1979; G. H. Stott, D. B. Marx, B. E. Menefel and G.

T. Nightengale, 1979; Т. Brignole, J. Stott, 1980; L. J. Buch, Т. Е.

Staley, 1980; И. М. Карпуть, В. М. Холод, 1982; G. H. Stott A. Pellah,

1982; Ю. Н. Федоров, И. Д. Фесенко, М. Ю. Горбунова, С. О. Кодыров, И. Ю.

Пичкова, 1983; Э. Купер, 1985; В. М. Чекишев, Т. В. Бондарь, О. А.

Колганова, 1985; B. C. Шипилов, В. П. Шишков, В. Г. Зароза, В. П. Карев, Г.

Д. Смоленская, 1987; Н. С. Жосан, 1988; В. Г. 3ароза, 1989; С. И. Плященко,

В. Т. Сидоров, А. Ф. Трофимов, 1990; Т. Е. Besser, O. Szenci, C. C. Gay,

1990; Ю. Н. Федоров, О. А. Верховский, 1996; F. В. Carry, 1996, также

свидетельствуют о том, что абсорбция иммуноглобулинов молозива происходит

обычно в течение первых 24—36ч жизни животного, постепенно замедляясь к 10-

12 ч возраста вплоть до полного прекращения. Всасывание иммуноглобулинов

происходит в кишечнике, и через лимфатические пути они попадают в кровь.

Иммуноглобулины появляются в лимфе уже через 1-2 ч после поступления их в

двенадцатиперстную кашку животного.

Большое значение молозива в создании иммунитета у новорожденных телят

впервые отметили P. H. Romer, H. Much [1906]. В дальнейшем их данные были

подтверждены исследованиями многочисленных авторов [R. Aschaffenburg, S.

Bartlett, S. K. Kon, P. Terry, S. Y. Thompson and D. M. Walker, 1949a; R.

Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, D. M. Walker, C. Briggs, E. Cotchin

and R. Lovell, 1949b; R. Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, J. M. Roy

and D. M. Walker, 1951a; R. Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, S. Y.

Roy, D. M. Walker C. Briggs and R. Lovell, 1951b; C. Briggs, 1951; E.

Selman, A. D. McEwan and E. W. 1970; P. Blackmer, 1973; V.C.R. Irvin, 1974;

С. В. Вальциферова, 1997; L. Hirszfeld et J Lille-Azyszkowierz, 1979; J. N.

Roy, 1980; И. М. Карпуть, В. М. Холод, 1982; С. С. Gay, 1984; J. J. Geene,

1984; R. Morar, 1985; Г. Н. Печникова, Т. В. Окунева, О. Н. Грызлова, 1988;

И. М. Карпуть, А. Г. Ульянов, В. И. Бабин, 1990; P.E. Howe, 1991; C. Staak,

1992; W. Zaremba, 1993; Т. Е. Besser, C. C. Gay, 1994; P. P. Игнатьев, Г.

Ч. Бондаренко, 1994; F. В. Carry, 1996; Д. Н. Масюк, 1997; L. J. Perino,

1997].

В сыворотке крови новорожденных телят не обнаруживали агглютинины [Th.

Smith and R. B. Little, 1922; Th. Smith and R.B. Little, 1922b; S. C. Whipp

and S. T. Donta, 1976; A. N. Thepfilopoulos, F.J. Dixon, 1979; J. M. Tyler,

J. S. Cullor, M. C. Thurmond, 1989; K. Walser und H. Brumer, 1987] к

кишечной палочке, хотя в сыворотке крови матерей и в молозиве они имелись в

значительном количестве. После поения теленка молозивом в сыворотке его

крови указанные агглютинины появлялись. Более того, молозиво, полученное в

первые часы после отела, в дозе 0,2 мл предохраняло морских свинок от

заражения 1-1,5 минимальными смертельными дозами культуры кишечной палочки.

Авторы пришли к заключению, что кормление телят молозивом имеет огромное

значение в создании невосприимчивости к колиинфекции.

В молозиве коров обнаружен иммунный глобулин, имеющий огромное значение,

как носитель антител, в создании устойчивости новорожденных телят к

инфекционным заболеваниям [H. W. Smith, 1971; H. W. Smith, 1976; H.W.

Smith, 1978] .

Исследования механизмов транспорта и катаболизма иммуноглобулинов in

vitro показало, что в начале всасывания образуется комплекс между

иммуноглобулинами и специфическими рецепторами энтероцитов. Во

взаимодействии с рецепторами клеток кишечника участвует Fc-фрагмент

иммуноглобулинов. Вероятно, связывание иммуноглобулинов с клетками

предохраняет их от катаболизма и способствует транспорту в кровь [D. Eddie,

M. Sohulkind, I. Robbins, 1971; И. И. Головистиков, 1979]. Процесс переноса

наиболее активно идет при рН 6,0-6,5, что соответствует кислотности

жидкости в тонком отделе кишечника новорожденных.

Иммуноглобулины крупного рогатого скота были идентифицированы как

аналоги по физико-химической и антигенной характеристике к человеческим

IgG, IgA и IgM. Два класса IgG: IgG1 и IgG2 иммунологически и биологически

различались. Секреторный IgA был идентифицирован в эпителии слизистой

оболочки кишечника в секреторных компонентах. IgG1 является доминирующим в

молочной секреции, IgM превышает IgA в секреции пищеварительного тракта

преруминантных телят [P. D. Porter, 1973; J. A. Roth, J. W. Sexton, 1975;

R. Sakulramrung, G. L. Domingae, 1985; G. Riedel-Caspari, 1993;] .

IgM и IgA играют важную роль в местной (локальной) реакции вымени при

заражения бактериальными антигенами, а также, вероятно, эти два

иммуноглобулина взаимодействуют в защитном механизме новорожденных телят

[R. A. Wilson and I. W. Jutila, 1976; P. Pivont, R. Gregoire and H.

Antoine, 1984; L. S. Young, 1985; M. L. Wickstrom, 1987].

У новорожденных интестинальная адсорбция колостральных антител не

селективная, таким образом иммуноглобулиновый профиль сыворотки

постколостральных телят имеет сходство с молозивом и это обеспечивает

необыкновенно высокий уровень секреторного IgA в циркуляции крови.

Секреторные IgA и IgM существенно содействуют пассивному иммунитету, хотя

их продолжительность в сыворотке крови телят составляет соответственно

только 2 и 4 дня [G. G. B. Klaus, A. Bennett and E.W. Jones, 1979; R.K.

Braun, B.C. Tennant, 1983; J. Brenner, 1991].

Концентрация иммуноглобулинов в молоке коров снижается быстро в течение

первых 3 дней лактации и, маловероятно, что содействует локальной защите

алиментарного тракта телят после первой недели. Тем не менее, локальный

синтез иммуноглобулинов является доказуемым в иммуноцитах, находящихся на

конце эпителиальных клеток пищеварительного тракта и секреция

иммуноглобулинов начинается на 2-ой неделе жизни [H. Fey, 1967; E. F.

Logan, and W. J. Penhale, 1971; J. E. Butler, C. A. Kiddy, C. Maxwele, M.

B. Hylton, A. Asofsky, 1971; J.W. Boyd, 1972; P. D. Porter, D. E. Noakes,

and W. D. Allen, 1972; E. F. Logan, 1974; В. М. Чекишев, 1977; Ю. Н.

Федоров, И. Д. Фесенко, М. Ю. Горбунова, С. О. Кодыров, И. Ю. Пичкова,

1983; В. М. Чекишев, Т. В. Бондарь, О. А. Колганова, 1985; Т. Е. Besser,

1988].

Эффективность абсорбции лактоглобулинов связана с количеством

проглоченного молозива [I. E. Selman, A. D. McEwan, E. W. Fisher, 1971; Т.

Brignole, J. Stott, 1980; С. С. Gay, Т. McGuire, S. M. Parish 1983;] и

влиянием присутствия коров матерей в течение первых 24 ч жизни [E. Selman,

A. D. McEwan and E. W. 1970; D. F. Wolfe, 1985; Ю. Н. Федоров, О. А.

Верховский, 1996].

В течение двух часов после приема молозива иммуноглобулины появляются в

сыворотке и, через четыре-восемь часов — в синовии. Иммуноглобулиновый

профиль синовии имеет сходство с сывороткой крови телят и коров-матерей [H.

Fey, 1972]. Это объясняет, почему телята, получившие молозиво более

резистентные к септицемии и полиартритам, чем телята, которые недостаточно

получают молозиво.

Молозиво превосходный источник энергии, протеина, витаминов А, Д и

комплекса витаминов В, а также кальция, фосфора, магния и хлоридов. При

дефиците указанных компонентов молозива и, особенно, витамина А

резистентность к Е. coli инфекции резко снижается. [Th. Smith and R. B.

Little, 1922; H. Fey und S. Lindt, 1982; С. С. Gay, 1984; J. J. Geene,

1984; R. Morar, 1985; P.E. Howe, 1991]

Молозиво коров содержит высокий уровень иммуноглобулинов, среди которых

75 % IgG, IgA и IgM вместе составляют около 20 % от иммуноглобулинов

молозива [J. A. Roth, J. W. Sexton, 1975].

По данным исследователей [E. W. Fisher, 1971; J. W. Boyd, 1972; E. W.

Fisher, A. A. Martinez, Z. Trainin, 1975], риск заболеваемости и

летальности можно предсказать у телят 48 ч возраста при определении уровня

сывороточных иммуноглобулинов. Новорожденные телята с уровнем IgG и IgM

меньше чем 0,8 и 0,2 мг/мл соответственно, погибали от неонатальной

септицемии, тогда как у телят с уровнем IgG и IgM 5,0 и 0,6 мг/мл

соответственно, развивалась энтеральная инфекция. Телята с

постколостральным сывороточным уровнем 7,5 и 0,8 мг/мл IgG и IgM

соответственно, были нормальными (клинически здоровы). Следовательно,

телята с умеренно низким уровнем иммуноглобулинов имели достаточный

иммунитет, предупреждающий септицемию, но не профилактировали энтерит.

Многочисленные исследования показывают, что имеется корреляция между

пассивно приобретенными сывороточными иммуноглобулинами и выживанием

неонатальных телят [H. Fey, 1967; H. Fey, 1968; E. F. Logan, A. Stenhouse,

D. J. Ormorod and W. J. Penhale, 1974; T. A. Ferris, J. W. Thomas,1975; R.

K. Braun, B.C. Tennant, 1983; P. Dobbelaar, I. P. T. M. Noordhuizen and K.

Van A. S. Keulen, 1987; A. Lacheretz, J. Chontol, P. Desmettre, 1987].

Определение уровня сывороточного иммуноглобулина у новорожденных

является клинически важным, так как их количество оказывает влияние на

восприимчивость телят к заболеванию. Иммуноглобулиновые фракции составляют

примерно одну третью значения общего сывороточного протеина. Иммуноглобулин

дефицитные телята имеют низкое значение общего протеина, на это указывают

показания рефрактометра. Рефрактометр не дает прямое измерение

сывороточного иммуноглобулина подобно цинк-сульфатному, натрий-сульфитному

и глутаральдегидному тестам, но предусматривает быстрый подсчет уровня

сывороточного иммуноглобулина и может легко применяться в практической

ветеринарии [D. G. McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; A. D. Me Ewan,

E. W. Fisher, I. E. Selman and W. J. Penhale, 1970; N. E. Pfeiffer, T. C.

McGuire, 1977; N. E. Pfeiffer, T. C. McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel,

1977; B. Tennant, B.H. Baldwin, 1979; H. Frerking, von E. Henkel and E.

Schwartz, 1980; H. Balbierz, M. Nicolaijczuk, J. Zeilinski, 1983]

Объем сыворотки необходимый для рефрактометрического теста очень

незначительный (примерно 0,2-0,3 мл) и если доступно центрифугирование,

оценку концентрации иммуноглобулина, соответствующую требованиям, можно

получить в пределах 30 мин из исследуемых проб. Рефрактометрический тест,

как а другие (цинк-сульфатный, натрий-сульфитный, глутаральдегидный)

зависят от гемоконцентрации и имеет незначительное значение при определении

иммуноглобулинового статуса дегидратированных (обезвоженных) телят [D. G.

McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; Ю. Н. Федоров, 1988].

Рефрактометр позволяет определить иммуноглобулиновый статус неонатальных

телят с различной степенью риска. Норма этой оценки для телят голштинской

породы крупного рогатого скота (молочного направления) следующая:

1. Высокий риск заболеваемости и летальности отмечают при уровне общего

сывороточного протеина 4,9 г/100 мл;

2. Средний риск — при уровне общего сывороточного протеина 5,0-5,4

г/100 мл.

3. Низкий риск — при уровне общего сывороточного протеина 5,5-6,9 г/100

мл. [D. G. McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; R.K. Braun,

B.C. Tennant, 1983]

Для изучения корреляции у крупного рогатого скота между пассивно

приобретенными антителами и инфекционными заболеваниями были проведены

многочисленные исследования, применяя метод количественного определения

иммуноглобулинов [A. D. Me Ewan, E. W. Fisher, I. E. Selman, 1970; J. W.

Boyd, 1972; W. J. Penhale, E. F. Logan, I. E. Selman, E. W Fisher, 1973; E.

F. Logan, A. Stenhouse, D. J. Ormorod and W. J. Penhale, 1974; G. H. Stott

and E. J. Reinhard, 1978; G. G. B. Klaus, A. Bennett and E. W. Jones, 1979;

G. H. Stott, D. В. Marx, В. E. Menefel, and G. T. Nightengale, 1979; N. H.

Teng, H. S. Kaplan, J. M. Herbert, 1985].

Наиболее широко применяются метод прямой радиальной иммунодиффузии [N.

E. Pfeiffer, T. C. McGuire, 1977; В. М. Чекишев, 1977; N. E. Pfeiffer, T.

C. McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel, 1977; А. А. Тихомиров, 1997] и

цинк-сульфатный тест помутнения [A. D. Mс Ewan, E. W. Fisher, I. E. Selman

and W. J. Penhale, 1970; Н. С. Жосан, 1989].

Наиболее точный и простой метод для тестирования уровня

иммуноглобулинов, применяемый на ферме или в научной лаборатории является

натрий-сульфитный преципитационный тест. Натрий сульфит в соответствующей

концентрации (14, 16, 18 %) вызывает преципитацию иммуноглобулинов, подобно

тому как и цинк-сульфатный тест. Значение помутнения, вызываемого

взаимодействием натрия сульфита и иммуноглобулинов пропорционально степени

защиты телят [N. E. Pfeiffer, T. C. McGuire, 1977; N. E. Pfeiffer, T. C.

McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel, 1977; T.C. McGuire, D.S. Adams,

1982; Ю. Н. Федоров, 1988].

Для выявления гипогаммаглобулинемии у неонатальных телят применяют также

быстрый скрининг тест. Тест основан на коагуляции иммуноглобулинов

глутаральдегидом в 10 % концентрации. Иммуноглобулиновая концентрация у

исследуемых телят, данным методом, была классифицирована как высокая 6

мг/мл, промежуточная 4,1-6 мг/мл и низкая 4 мг/мл [B. Tennant, B.H.

Baldwin, 1979].

1.3. Неспецифическая иммунологическая реактивность новорожденных телят

Результаты многолетних исследований состояния неспецифической

иммунологической реактивности организма сельскохозяйственных животных

свидетельствует о том, что защитные силы их являются динамичным показателем

и определяются как генетическими особенностями организма, так и

Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9